立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法
2021-02-01 13:02:45|270|起点商标网
专利名称:立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法
技术领域:
本发明涉及立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法。本发明还涉及大体上纯化的醇对映体和应用这种对映体制备药学活性的哌嗪衍生物。
各种各样的,例如可用于使用于人或兽医的药物组合物的生物活性物质,在其分子结构中包含手性中心,且因此出现旋光异构体。在现有技术中通常已知的是,经常只有对映体之一存在所需的最适宜的生物活性。在组合物或药剂中存在的其它旋光对映体可引起或提高一些副作用和受体即人体或动物体的负担。通常认为越来越需要以大体纯的对映体形式施用生物活性物质,这些对映体尤其具有所需的生物活性。因此,在药学活性物质的制备方法中外消旋体拆分成其对映体,经常是一个重要的步骤。
利用三种主要的方法将外消旋体拆分成它们各自的对映体。三种方法中的第一种,即,根据不同的物理性质(如结晶结构)拆分,这种方法仅偶然使用。
最经常使用的第二种方法包括与市售的旋光活性剂反应产生非对映体,该非对映体具有不同的物理性质。因此用例如重结晶的方法可分离按这种方式获得的非对映体,此后,通过化学后处理可再生各个对映体。很明显,由于不能应用和回收昂贵的旋光活性试剂,这种拆分外消旋体的方法是即费工又费钱的。
最近,在更经济的拆分方法中,使用酶选择性地使外消旋体的一个对映体化学改性,然后使改性的对映体与未改性的对映体分离。例如Bianchi等人(J.Org.Cher.,1988,53,5531-5534)曾报道用酸酐作酰化剂在脂酶催化下选择性地酯化外消旋的醇。他们成功地获得了高旋光纯度,即对映体过量过量(ee)超过95%的一些伯醇和仲醇。事实上,对大多数药物应用需要的对映体应过量至少95%。尽管Bianchi及其合作者获得了几种结果,也观察到一些醇没有或不足以立体选择转化,最近在Ennis等人的两篇出版物(Tetrahedron Lett.,1992,33,6283-6286和6287-6290)中,酶拆分的方法是使用2-羟甲基-1,4-苯并二噁烷作底物,作者观察到,采用这种方法拆分,不能达到所要求的旋光纯度标准,因此需要重复酶促拆分。
为了从剩余的醇中有利地分离生成的酯,Terao等人(Chem.Pharm.Bull.,1989,37,1653-1655)曾用琥珀酸酐生产琥珀酸单酯对映体,该对映体容易彼此分离,采用碱液洗涤未反应的醇对映体。在此方法中,只用很少的努力,所需的活性对映体就能从不需要的非活性的对映体中分离,尽管旋光纯度(即对映体过量)的结果一般不能令人满意。仅以一种底物,即(1-羟乙基)苯(一种仲醇)作底物,通过与琥珀酸酐进行对映选择性酯化酶促拆分外消旋体是令人满意的。
除了醇外消旋体的酶促拆分经常出现无法预知的结果外,通过上述出版物可断定,另一个固有的问题是从其相应的外消旋体中分离所需的醇对映体。事实上,各种外消旋体拆分除了获得所需的对映体,还获得了通常无用的不需要的旋光对映体。这意味着,至少50%(通常是昂贵的)底物应认为是化学废物,或者换句话说,外消旋体拆分的产率,按活性物计最多50%。这一点通过上述Ennis等人的出版物中的表清楚地证实了,该表显示了无论以未转化的醇或转化后的酯形式,最初的外消旋体可提供50%的所需对映体。
本发明的一个目的是提供一种立体选择性制备杂二环醇对映体的经济的操作方法。
通过上述定义的酶促方法可达到此目的,根据本发明该方法的特征在于大体上纯化的通式(Ⅰ)的对映体 其中X为O、S、NH、N(C1-C4)烷基或CH2;
Y1、Y2和Y3各自独立地为氢或选自卤素、C1-C4烷基、C1-C4烷氧基、C1-4卤代烷基、硝基和氰基的取代基;
NO2取代基连接于双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R或S构型;
是通过其相应的醇外消旋体、,由下述连续反应步骤制备的(ⅰ)在具有立体选择性酯化活性的酶的影响下,所述外消旋体与酰化剂酰化;
(ⅱ)从生成的酯中分离未酯化的化合物,并分离所需的大体纯化的式Ⅰ醇对映体或其酯;
(ⅲ)使生成的酯水解,由此转化所述的酯为相应的醇对映体;且(ⅳ)在碱性条件下,将不需要的醇对映体转化成起始的醇外消旋体,以使其重复应用。
与期望的完全相反,上述碱处理(步骤ⅳ)的结果是不需要的醇对映体的外消旋作用。因为连接在手性中心(C*)的质子根本不是酸性的,这种现象无法解释。由此获得的醇外消旋体可以再用作起始物进行下一个拆分反应。很明显,从经济上和从环境上的角度看,本发明使酶催化立体选择性制备醇对映体成为可行的方法。
上述酰基化反应适合的酰化剂为将在下文例示的酸酐和乙烯基酯,如乙酸乙烯酯,丙酸乙烯酯,丁酸乙烯酯,异丁酸乙烯酯,等等。
酰化反应优选在含有少量水或含水缓冲液的有机溶剂系统中进行。
最经常使用的酶是可商业上购买的粗固体制备物。这易于其回收。然而,所述的酶也可以以固定的条件例如共价结合或吸附在适合载体上使用。通过采用各种分离相关化合物的已知技术如提取、重结晶、制备柱色谱等,可从生成的酯中分离未酯化的化合物。
上述大体纯化的醇对映体,意为含有对映体纯度(ee)起过大约95%的醇化合物。如果在本发明的酶促方法中未达到上述对映体纯度,通常通过简单的重结晶方法可以使对映体的纯度改善到所需水平。当然如本文前述,分离所需的大体上纯化的醇对映体还包括重结晶方法,以提高对映体纯度和除去少量杂质。
关键的反应步骤,即在碱性条件下不需要醇对映体的外消旋作用,可以容易地在质子惰性和protic两种条件下进行。将适合的碱如氢氧化钠、氢氧化钾、氢氧化锂和氢氧化铵等溶于水或含有水混溶有机溶剂(如醇)的含水溶剂混合物中。用于质子惰性系统的碱的例子为(a)氢化物,例如在质子惰性溶剂如DMSO中的氢化钠;(b)醇钾,例如在质子惰性溶剂如醚(例如THF)中的叔丁醇钾和甲基-2-丁醇钾;和(c)烷基锂和烷基酰胺锂,例如在位子惰性溶剂如THF中的甲基锂、各种丁基锂和二异丙基酰胺锂。用酸中和后,可以以好的产率回收醇外消旋体,例如通过用适合的有机溶剂从水相中提取,然后如果需要,蒸发掉溶剂以备再用。
如上述(ⅲ)所述,生成酯的水解可方便地在酸性条件或弱碱性条件下进行,以避免发生醇对映体的外消旋化。
但是,作为本发明的一个具体实施方案,上述酯的水解和醇对映体的外消旋化可以结合。在此方法中,上述反应步骤(ⅲ)和(ⅳ)可被结合,使得通过一个反应步骤获得还原作用。如上述对外消旋反应所定义的,足够强的碱性条件对于同时进行两种作用(即,同时进行水解和外消旋作用)是需要的。
本发明的方法优选旨在通过进行上文所定义的连续反应步骤立体选择性制备具有苯并二噁烷结构的大体纯化的醇对映体,即通式(Ⅱ)化合物 其中Y′为氢或选自氯、氟和甲基的取代基;
NO2取代基连接在苯并二噁烷环的5-或7-位;和
C*-原子或是R或是S构型。
优选使用的酶为固体且因此能够很容易地回收使之重复使用。在上述步骤(ⅰ)后,即在酰化步骤完成后,通过采用适合于此目的的方法(如简单过滤),可以方便地进行酶回收。如果使用的酶是结合在适合载体如硅藻土(见上述Bianchi等人的出版物)或玻璃体上,也可通过简单过滤回收酶,如果需要,然后洗涤滤液去除杂质。
对于使用乙烯酯作为酰化剂优选使用羧酸酐,因为羧酸酐,如乙酸酐、丙酸酐、丁酸酐、异丁酸酐或己酸酐,在适合的酶存在下,通常具有较好的性能。为了利于未酯化的化合物从生成的酯中分离,优选使用环羧酸酐,特别是琥珀酸酐或戊二酸酐。以此方式获得的形成酯,可容易地从未酯化的化合物中分离,即在上述条件下用弱碱溶液提取,此时酯仍然保持完整。
进行立体选择性酯化作用的适合的酶为水解酶,如天然存在和基因工程得到的脂酶和酯酶。适合的脂酶的例子为黑曲霉,假丝酵母(Candida cylindracea)(例如Meito MY 30或Amano AY),解脂假丝酵母,Chromobacterium viscosum,白地霉,Humicola lanuginosa,米赫毛霉,爪哇毛霉(例如Amano M),猪胰腺脂酶,圆弧青霉,娄格法尔特氏青霉,Pseudomonas cepacia(Amano PS),荧光假单胞菌(例如Amano P),雪白根霉(例如Amano N),爪哇根霉(例如Amano F),无根根霉和德列马根霉。与Bianchi等人的出版物中所提出的相反,现已发现,一些脂酶,特别是假丝酵母(Candida cylindracea)脂酶对S对映体优先。因此上述脂酶能够立体选择性酯化S对映体,结果能得到高产率和高立体化学纯度的剩余的R对映体。其它脂酶,例如荧光假单胞菌和其它许多脂酶,优选转化R对映体且因此适合于分离同样高产率和高立体化学纯度的S对映体。
本发明还涉及如前文表示的通式Ⅰ的大体纯化的醇对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位,和C*-原子具有R构型。
通过采用本发明的酶促方法,可方便地获得该对映体。本文此后将说明,该对映体在制备一些药学活性哌嗪衍生物的方法中,可用作关键中间体。
在Drugs of the Future 1988,13,31-33中,描述了flesinoxan盐酸盐,一种有效的口服活性5-HT1A激动剂的合成。相应于上述式Ⅱ,其中Y′为7-氯取代基的外消旋的苯并二噁烷,首先用苯甲酰氯转化以保护其醇功能团。随后催化氢化后与双(氯乙基)胺反应获得外消旋的哌嗪化合物。在此相中,用(+)-樟脑磺酸进行哌嗪外旋体的拆分,几次重结晶后,获得旋光纯的R-(+)-对映体。该对映体与N-(4-氟苯甲酰基)氮丙啶反应,通过苯甲酸酯的皂化作用使羟基去保护,最后用盐酸处理获得所需的大体纯化的(+)-对映体,即flesinoxan·HCl。在上述Ennis等人最近的出版物(Tetrahedron Lett.,1992,33,6287-6290)中,描述了flesinoxan和其旋光对映体的酶促拆分,这是拆分的最后步骤。在费力的双路酶促方法后,所需的flesinoxan可以以令人满意的对映体纯度分离。
从上述明显地看到,所述的flesinoxan制备是费力和昂贵的,特别是因为对映体的费力拆分是建立在这样的多步合成方法前期之上的。很明显,在该合成方法的前期,在拆分中活性物质不可避免的丢失是更不利的。
现已发现,通式Ⅰ的基本纯化的醇对映体可方便地被用作合成药学活性的哌嗪衍生物的关键中间体,因为避免了在多步合成前期费力的外消旋体拆分作用。
因而,本发明还涉及应用本文前述表示的通式Ⅰ的大体纯化醇对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,NO2取代基连接于双环系统的5-位,和C*-原子具有R构型,通过将所述对映体进行下述反应程序,制备药学活性的哌嗪衍生物(ⅰ)用适合的羟基保护基保护游离羟基,同时保持C*-原子的绝对构型,生成下列通式的化合物 其中R1为羟基保护基;
(ⅱ)在保持C*-原子绝对构型的同时,硝基取代基还原,以将所述的式Ⅲ大体纯化的对映体转化为下列通式的胺化合物
(ⅲ)转化上述获得的式Ⅳ化合物成为下列通式的哌嗪化合物 同时保持C*-原子的绝对构型,(ⅳ)保持C*-原子绝对构型的同时,将所述的式Ⅴ哌嗪化合物衍生为下列通式的哌嗪衍生物
其中A为直链或支链C2-C4亚烷基,和B为苯基或选自噻吩基、吡喃基、呋喃基、吡咯基、吡啶基和吡嗪基的杂环基,其中的基团可被一个或多个选自卤素、C1-C3烷基、C1-C3卤代烷基、氰基、硝基、羟基、酯化羟基和C1-C3烷氧基的取代基取代,该方法是通过所述的式Ⅴ哌嗪化合物,或者(a)与下列通式的化合物反应其中L为离去基团,优选地选自氯、甲磺酸根和甲苯磺酸根,或者(b)与下列通式的化合物反应 生成其中A是亚乙基的通式Ⅵ哌嗪衍生物;且最后(ⅴ)将所述的式Ⅵ化合物去保护生成下列通式的游离醇对映体
其中C*-原子具有R-构型。
从上所述可以清楚地看出,在保持C*-原子绝对构型的情况下,可容易地进行上述随后的反应步骤,由此不损害最终哌嗪衍生物的对映体纯度。
通过适合的酯或醚功能团可以保护游离的羟基(反应步骤ⅰ)。适合的羟基保护基的例子为(三烃基)甲硅烷基,(二烃基)(烃氧基)甲硅烷基,叔(C4-C12)烷基,(可选择性取代的)苯氧基[(C2-C8)二烷基]乙基,(C1-C4)烷氧基[(C2-C8)二烷基]甲基,构成(硫)乙缩醛的基团如二-和四氢吡喃-2-基和二-和四氢呋喃-2-基,以及从单一、二-或三-取代的乙酸衍生的构成酯的基团,其中取代基优选选自(C1-C12)烷基和可选择地具有一个或多个取代基的取代苯基,可选择地具有一个或多个甲基的取代环己烷甲酸或金刚烷甲酸。上述术语烃基包括(C1-C8)烷基,(C2-C8)链烯基,(C2-C8)链炔基,苯基和被一个或多个取代基取代的苯基。上述苯基和苯氧基适合的取代基为羟基,烷氧基,烷基羰基氧基,氨基,烷基氨基,二烷基氨基,烷基羰基氨基,烷基磺酰氨基,硝基,烷基磺酰基,烷基羰基,卤素,氰基,烷基(其中烷基取代基包含1至5碳原子),和(C3-C12)环烷基。
硝基生成氨基的还原作用(步骤ⅱ),可以方便地在适合的金属催化剂例如Pd/C的影响下、在适合的极性有机溶剂例如乙醇中与氢进行。
氨基化合物转化成哌嗪化合物(步骤ⅲ)可容易地例如借助双(2-氯乙基)胺、在适合的有机溶剂例如芳香烃如甲苯和氯苯等中进行。
上述(ⅳ)中定义的反应步骤优选如欧洲专利说明书138280中所述,即在惰性有机溶剂或无溶剂中、以及在所述专利说明书中所述的反应条件下进行。
最后羟基的去保护可与适合于酯或醚裂解的反应试剂一起进行。在弱碱或酸性条件下,在保持C*-原子绝对构型的情况下,酯可以很容易地被水解。醚的裂解优选借助强酸在有机溶剂中进行。
本发明还涉及上述反应程序中的新中间体,即,前述表示的通式Ⅲ和Ⅳ的大体纯化的对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,并且C*-原子构型与上述式Ⅰ化合物C*-原子的R构型相应。
本发明最后涉及制备上述通式Ⅸ的大体纯化的哌嗪衍生物对映体的方法,该方法首先是从其相应的外消旋醇进行本文上述连续的反应步骤制备前述通式Ⅰ的大体纯化的醇对映体(该对映体中C*-原子具有R构型),接着借助上述定义的反应程序将所述的式Ⅰ化合物转化成所需的哌嗪衍生物。
现在将用下述具体的实施例更详细地说明本发明。
实施例Ⅰ伴随搅拌,在37℃将125mM(±)-2,3-二氢-5-硝基-7-氯-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇(BDA)、250mM丙酸酐和0.2%(w/v)荧光假单胞菌脂酶(Amano P)在TBME(叔-丁基甲基醚)/己烷/水(50/50/0.1v/v/v)中的溶液中保温。转化80%后(醇的酯化),过滤掉酶终止反应。在Zorbax C-8柱上分离出生成的酯和剩下的醇,采用手性α-糖蛋白(AGP)柱分析剩余醇的对映体量。不经分离还可通过1H-NMR,采用(+)-或(-)-三氟甲基-9-蒽甲醇作为手性拆分溶剂确定剩余醇和生成酯的对映体过量。剩余的醇中含有对映体过量97.5%的S-(-)-醇。
实施例Ⅱ采用实施例Ⅰ中所述的相应方法,用0.2%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)进行酯化,69%的醇转化后,停止反应。剩下的醇中含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。如实施例Ⅰ中所述,通过1H-NMR谱鉴定R-(+)-醇。测得在乙腈中R-(+)-BDA的具体旋光度为[α]25D=+181.1°。
采用相应的方法制备R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-7-甲基-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇和R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇,具有同样高的对映体过量。
实施例Ⅲ在25℃,伴随搅拌将250mM(±)-BDA、500mM丁酸酐和0.5%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在己烷/乙酸乙酯/水(50/50/0.2v/v/v)中的溶液保温。65%的醇转化后,停止反应,剩下的醇中含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。
实施例Ⅳ采用实施例Ⅲ中所述的相应方法,将250mM(±)-BDA分别与500mM异丁酸酐或己酸酐保温。分别转化了63%和60%的醇后,停止反应,在两种情况下都含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。
实施例Ⅴ在室温下,伴随搅拌将350mM(±)-BDA、600mM琥珀酸酐和2.4%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.6v/v/v)中的溶液保温。70%醇转化后,过滤停止反应。剩下的醇含有对映体过量98%的R-(+)-对映体。
实施例Ⅵ对映选择性酯化作用反应式 将15.2kg(±)-BDA、7.6kg琥珀酸酐和3.7kg Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在200l叔丁基甲基醚(MTBE)、17.51乙腈和925ml水的混合物中的溶液,在反应容器中、在室温和氮气氛下保温。达到60-63%转化(HPLC,大约20小时)后,过滤掉酶终止反应。用10l MTBE洗涤酶两次,并且有机层用901和301碳酸盐水溶液(150g Na2CO3在1l水中)连续冲洗。用10l MTBE萃取碳酸盐溶液两次。然后,合并的有机层用30l水、通过将40l30%HCl溶于15l水中得到的稀盐酸和10l水连续洗涤。在60℃真空下蒸馏掉MTBE。将结晶残余物(4.6kg)在60℃溶入15l96%EtOH,伴随搅拌向此溶液中加入10l正己烷。将混合物冷却到大约10℃,搅拌2至10小时后,吸出结晶产物,用10l乙醇/己烷(15/35v/v)并用5l正己烷连续洗涤并干燥,结晶产物是纯(ee98%)(+)-对映体,即,R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-7-氯-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇[R-(+)-BDA];产量大约4kg。
熔点116.0℃;[α]25D=+194.8℃(c=4.5;甲醇)。
实施例Ⅶ生成的S-(-)-BDA酯的皂化作用反应式 在大约23℃向实施例Ⅵ实验的合并水层中加入15l 50%NaOH。在23℃搅拌反应混合物大约15小时,然后冷却到5℃,接枝后,在5℃搅拌混合物3小时。吸出结晶产物后,用60l水洗涤并干燥以大约10kg的产量获得具有过量S-(-)-BDA对映体的产物醇。
实施例ⅧS-(-)-BDA对映体的外消旋作用反应式 在氮气和回流下,将实施例Ⅶ获得的S-(-)-BDA以1kg的量溶于6l正丙醇中。用大约15分钟向此溶液中加入235ml 2N NaOH水溶液。使溶液回流1.5小时。冷却到大约40℃后,加入47ml浓HCl溶液(至pH=3)。在大约60℃下真空蒸掉丙醇。向残余物中加入4l正己烷,冷却到20℃并伴随缓慢搅拌使该溶液接枝,在20℃搅拌二小时且在0℃过夜后,吸出结晶产物并用0.5l正己烷洗涤两次,然后使结晶产物与7.5l水在大约70℃搅拌1小时,冷却至20℃后,加入350ml正己烷并再搅拌一小时,过滤掉结晶产物并用0.5l正己烷洗涤两次。干燥后,以产量850g获得所需的外消旋BDA;含量95%;ee=0。熔点108.2℃。
同样通过以二异丙基氨基化锂作为碱、在THF作为溶剂下也可完成外消旋步骤反应温度40℃;5.5小时后外消旋作用完全。
实施例ⅨS-(-)-BDA酯的皂化和同时发生的外消旋作用向一等份在实施例Ⅵ中获得的碱水层(由此得到43.5g(126mmol)S-(-)-BDA酯、620ml碳酸盐水溶液(150g Na2CO3在1l水中),150ml水和59ml乙腈)中加入250ml乙醇和50ml 50%w/v氢氧化钠水溶液。伴随搅拌回流反应混合物16小时。冷却到40℃后,小心加入160ml12N盐酸水溶液(pH大约为5)。将反应混合物冷却到室温,此后吸出固体产物,用水洗涤并干燥。获得对映体过量为0的23.8g浅棕色(±)-BDA。
实施例Ⅹ从R-(+)-BDA制备flesinoxan反应式 (a).在溶剂二氯甲烷中,R-(+)-BDA(1)与苯甲酰氯进行苯甲酰化作用生成化合物(2)。
向20g(0.081mol)化合物(1)在250ml二氯甲烷和12ml三乙胺中的溶液中,滴加10.1ml(0.086mol)苯甲酰氯;温度为25℃。加入10ml水并搅拌10分钟后分离液层。用50ml水冲洗有机层,用25ml二氯甲烷萃取合并的水层。合并有机层,并在100毫巴和30℃蒸发。加入100ml甲苯后,将产物蒸发至干燥(10mbar,50℃)。
获得所需的化合物2,产率97.3%,纯度97.5%。
TLC(洗脱剂CH2Cl2/CH3OH/NH4OH=94/5/1)∶Rf=0.71。
(b).在催化量的Pd/C存在下用氢气还原硝基-化合物(2)成相应的氨基-化合物(3);乙醇为溶剂。
向6.0g(16.7mmol)化合物(2)在120ml乙醇和40ml乙酸乙酯中的溶液中加入1.50gPd/C制备物(39.1%Pd/C10%和60.9%水)。搅拌5分钟后,加入10.8g(10当量)甲酸铵,开始在室温下搅拌混合物1小时,然后在40℃搅拌2小时。将反应混合物冷却到20~25℃,滤掉Pd/C并用50ml乙醇洗涤。在100毫巴和50℃蒸发乙醇。残余物溶于75ml乙酸乙酯和5ml 2N氢化化钠水溶液。液层分离后,用10ml乙酸乙酯萃取水层两次。合并的有机层用25ml水洗涤二次,并在100毫巴和50℃减压至干。在50℃真空干燥后,获得的所需产物(3),纯度为96.0%,产率97.0%。
TLC(见上述)Rf=0.67。盐酸盐的熔点218-223℃。[α]25D=+65.1°(c=3.38;甲醇)。
(c)以二甲苯作溶剂用双(2-氯乙基)胺盐酸盐转化氨基化合物(3)成相应的哌嗪-化合物(4)。
向4.40g(14.8mmol)化合物(3)的50ml二甲苯溶液中加入2.8g(14.8mmol)双(2-氯乙基)胺盐酸盐。在氮气氛下回流反应混合物48小时。将反应混合物冷却至35℃后,加入在25ml 5%碳酸氢钠水溶液中的1.36ml 50%氢氧化钠水溶液。将反应混合物在35℃下搅拌3小时,然后加入10ml 2N氢氧化钠水溶液和20ml水。在35℃搅拌10分钟后,将反应混合物冷却至20-25℃,分离液层。用25ml水洗涤二甲苯层三次。在10mbar和50℃将有机层减压至干(100%乙醇为共沸剂)。获得所需产物(4),纯度85.5%,产率82.3%。
TLC(见上述)Rf=0.07,HCl-盐的熔点183-186℃。[α]25D=+63.66°(c=1.67;CH3OH)。
(d)哌嗪化合物(4)与4-氟苯甲酰基氮丙啶反应生成化合物(5)。
将对氟苯甲酰基氮丙啶(53.8g;325mmol)和200ml甲苯加入到100.7g(284mmol)的化合物(4)中。将反应混合物保持在80℃减压下(旋转蒸发);蒸发150ml。加入100ml甲苯后,如上所述再处理反应混合物2小时。蒸发至干后,将甲醇加入到残余物中并使产物在5℃结晶。吸出产物后,用甲醇(200ml)和己烷(400ml)连续洗涤,并干燥。获得所需化合物5,纯度为82%,产量为105g(71%)。处理母液获得附加量的所需产物。
TLC(见上述)Rf=0.59。熔点126-127℃[α]25D=+56°。(c=4.32;CH3OH)。
(e)在EtOH中酯(5)与KOH皂化,随后在EtOH中用HCl酸化,生成flesinoxan(6)。
向104g(0.2mol)化合物(5)在1500ml 96%乙醇中的悬浮液中加入14g(0.25mol)KOH在10ml水中的溶液。在20-25℃搅拌3.5小时后,在100mbar和50℃蒸发乙醇。将水(500ml)和二氯甲烷(200ml)加入到残余物中,并将反应混合物搅拌5分钟。分离液层后,水层用250ml二氯甲烷萃取。合并的有机层用100ml水洗涤两次。干燥后,将有机溶液蒸发至剩余体积大约200ml。向此残余物中加入300ml乙酸乙酯,并蒸发掉100ml液体。加入100ml正己烷后,使产物在5℃结晶过夜。过滤结晶产物,用30ml冷乙酸乙酯和200ml正己烷连续洗涤,在30℃干燥。获得Flesinoxan(纯度78%),产量73g。
TLC(见上述)Rf=0.67。熔点183-185℃[α]20D=+27.8°(c=2.49;CH3OH)。
实施例Ⅺ在室温下伴随搅拌将0.2M 5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英(dioxin)-2-甲醇、0.34M琥珀酸酐和2%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.3v/v/v)中的溶液保温。41%醇转化后(用Zorbax C-柱确定),过滤终止反应。剩下的醇含有对映体过量38%(应用Chiracel -OD柱确定)的(+)-对映体。
实施例Ⅻ6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇的制备反应式 (a)搅拌下向18.5g(91mmol)化合物(7)在50ml甲苯中的悬浮液中加入30ml(314mmol)乙酸酐。
在100℃加热4小时后,加入另外10ml的乙酸酐。再连续加热2小时。除去热浴后小心加入大约25ml乙醇。冷却到室温后,反应混合物用乙酸乙酯和水处理。有机层用水洗涤两次并用硫酸镁干燥,过滤后真空蒸发溶剂。向18.23g的浅棕色固体中加入75ml乙醇和80ml 2N氢氧化钠水溶液。在室温下整夜搅拌此暗红色悬浮液。冷却到0℃后,加入90ml 2N盐酸溶液。吸出固体物质并用水洗涤两次,在室温和常压下干燥后,获得16.5g桔黄色粉末(8)。
TLC(洗脱剂乙酸乙酯/石油醚40-65℃=50/50)Rf=0.3,熔点156-160℃。
(b)向8g(34.5mmol)化合物(8)在80ml甲苯和80ml 1-甲基-2-吡咯烷酮混合物中的溶液中加入5.6g(40mmol)碳酸钾粉末。在回流温度下搅拌反应混合物一小时,通过迪安-斯达克榻装置除去水。在大气压下蒸掉甲苯。冷却到100℃后,加入9.3g(41mmol)甲苯磺酸缩水甘油酯。在120℃搅拌4.5小时后,将悬浮液冷却至室温。用水和乙酸乙酯稀释反应混合物,并用2N盐酸水溶液使pH升至5。水层用乙酸乙酯萃取两次。合并的有机层用盐水洗涤并用硫酸镁干燥,过滤掉硫酸镁后,在真空条件下蒸发溶剂,获得10.86g深棕色油。经中压色谱纯化(洗脱剂乙酸乙酯/石油醚40-65℃=25/75)得到红色片状的4.18g化合物(9)。
熔点76-84℃。
TLC(见上述)Rf=0.15。
(c)向3g(10mmol)化合物(9)在100ml甲醇和30ml水混合物中的悬浮液中加入1.44g碳酸钾粉末。在室温下搅拌1.5小时后,用水稀释处理该反应混合物,并用乙酸乙酯萃取两次。合并的有机层用稀盐水洗涤三次并用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁后,真空蒸发溶剂,获得2.53g桔黄色固体化合物(10)(NMR)。
TLC(乙酸乙酯/石油醚40-65℃=75/25)Rf=0.3。
1H-NMRδ(ppm)6.99(d,1H,芳香);6.90(s,1H,NH);6.88(d,1H,芳香);5.02(t,1H,CH2OH);4.19(dd,1H,OCH2CH);4.11(dd,1H,OCH2CH);3.40/3.50(群峰,3H,CHCH2OH)。
实施例ⅩⅢ将0.35M 6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇、0.6M琥珀酸酐和3.3%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.6v/v/v)中的溶液,伴随搅拌在室温下保温。转化47%的醇后(应用Zorbax C-柱确定),过滤终止反应。剩余的醇中含有对映体过量39%的(+)-对映体(应用Chiracel -OD柱确定)。
实施例ⅩⅣ将0.13M2,3-二氢-7-硝基-1,6-苯并二噁英-2-甲醇、0.24M丁酸酐和25%(w/v)脂酶在二异丙基醚/乙腈/水(50/50/0.5v/v/v)中的溶液,伴随搅拌在室温下保温。64%的醇转化手,过滤终止反应。剩余的醇含有对映体过量42.4%的(+)-对映体。
实施例ⅩⅤ(+)-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇的外消旋化向0.1g(47mmol)(+)-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇([α]20D=+65.5(c=0.58,96%乙醇))在15ml乙醇中的溶液中加入0.2ml(40mmol)2N氢氧化钠溶液。回流125小时后,使反应混合物冷却至室温。用水稀释反应混合物并用乙酸乙酯萃取两次,有机层用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁后,真空下蒸发溶剂,获得0.1g浅棕色固体物质。旋光率(见上述)为0,采用手性α-糖蛋白(AGP)柱分析对映体过量,结果为ee=0。
采用正丙醇作溶剂,结果反应30小时。
实施例ⅩⅥ(+)-5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇的外消旋向0.85g(3.46mmol)(+)-5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇([α]20D=+55(c=0.4,乙醇))在80ml乙醇中的溶液中加入15ml 2N氢氧化钠水溶液。回流16小时后,使混合物冷却至室温,并如实施例XV所述进行处理。获得的固体物质的旋光率(见上述)为0。在Chiracel-OD柱上的手性分析显示出ee=0。
实施例ⅩⅦ(+)-6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇向2g(8.18mmol)(+)-6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇([α]20D=+14(c=0.71,96%乙醇))在50ml乙醇中的溶液中加入2N氢氧化钠水溶液。回流3小时后,加入1ml其它等份的2N氢氧化钠水溶液。回流32小时后,使反应混合物冷却至室温,并用盐水稀释,水层用乙酸乙酯萃取两次。
合并的有机层用稀盐水洗涤两次并用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁并真空蒸发溶剂后,获得1.83g橙棕色固体物质。旋光率为0,并且在Chiracel-OD柱上的手性分析显示出ee=0。
实施例ⅩⅧ通过氢化钠的外消旋作用向0.2g(0.8mmol)R-(+)-BDA和悬浮于矿物油中的0.01g(0.5当量)60%氢化钠的混合物中加入5mlDMF。气体停止发生后,在室温搅拌此桔黄色溶液,在0.75小时内完成外消旋反应,通过Chiracel-OD柱进行分析。
在THF溶剂中,同样成功地发生该反应。
权利要求
1.立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法,其特征在于通过下述连续反应步骤从其相应的醇外消旋体制备大体上纯化的通式(Ⅰ)的对映体 其中X为O、S、NH、N(C1-C4)烷基或CH2;Y1、Y2和Y3各自独立地为氢或选自卤素、C1-C4烷基、C1-C4烷氧基、C1-4卤代烷基、硝基和氰基的取代基;NO2取代基连接于双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R或S构型;(i)在具有立体选择性酯化活性的酶的影响下,用酰化剂使所述外消旋体酰化;(ii)从生成的酯中分离未酯化的化合物,并分离所需的大体纯化的式Ⅰ醇对映体或其酯;(iii)使生成的酯水解,由此转化所述的酯为相应的醇对映体;且(iv)在碱性条件下,将不需要的醇对映体转化成起始的醇外消旋体,以使其重复应用。
2.如权利要求1的方法,其特征在于采用足够强的碱性条件使(ⅲ)和(ⅳ)的反应步骤结合,以同时进行酯水解和醇对映体的外消旋作用。
3.根据权利要求1或2的方法,其特征在于基本上纯化的通式(Ⅱ)对映体是通过权利要求1的连续反应步骤制备的, 其中Y1是氢或选自氯、氟和甲基的取代基;NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位;和C*-原子或是具有R构型或是具有S构型。
4.根据上述任一权利要求的方法,其中反应步骤(ⅰ)后,用适合于回收目的的方法回收酶。
5.根据上述任一权利要求的方法,其特征在于羧酸酐用作酰化剂。
6.根据权利要求5的方法,其特征在于琥珀酸酐或戊二酸酐用作酰化剂。
7.根据上述任一权利要求的方法,其特征在于采用的酶是具有立体选择性酯化活性的脂酶或酯酶。
8.权利要求1中表示的基本纯化的通式Ⅰ的醇对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R构型。
9.应用权利要求1中表示的基本上纯化的通式Ⅰ的醇对映体,通过将所述对映体进行下述反应程序,制备药学活性的哌嗪衍生物的用途其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-位;且C*-原子具有R构型,(ⅰ)在保持C*-原子绝对构型的同时,用适当的羰基保护基保护游离羟基,以生成通式Ⅲ化合物 其中R1为羟基保护基;(ⅱ)在保持C*-原子绝对构型的同时,硝基取代基还原,以转化所述基本上纯化的式Ⅲ对映体成为通式(Ⅳ)的胺化合物 (ⅲ)在保持C*-原子绝对构型的同时,转化上述获得的式Ⅳ的氨基化合物成为通式(Ⅴ)的哌嗪化合物 (ⅳ)在保持C*-原子绝对构型的同时,将所述Ⅴ的哌嗪化合物衍生成通式(Ⅵ)的哌嗪衍生物 其中A为直链或支链C2-C4亚烷基,和B为苯基或选自噻吩基、吡喃基、呋喃基、吡咯基、吡啶基和吡嗪基的杂环基,其中的基团可被一个或多个选自卤素、C1-C3烷基、C1-C3卤代烷基、氰基、硝基、羟基、酯化羟基和C1-C3烷氧基取代,该方法是通过所述的式Ⅴ哌嗪化合物,或者(a)与下列通式的化合物反应L-A-NH-CO-B(Ⅶ)其中L为离去基团,优选选自氯、甲磺酸根和甲苯磺酸根,或者(b)与下列通式的化合物反应 生成其中A是亚乙基的通式Ⅵ的哌嗪;并且最后(ⅴ)所述的式Ⅵ化合物去保护,生成通式(Ⅸ)的游离醇对映体 其中C*-原子具有R-构型。
10.权利要求9中所表示的、基本纯化的通式Ⅲ对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,且C*-原子的构型相应于权利要求1中表示的式Ⅰ化合物C*-原子的R构型。
11.权利要求9中表示的、基本纯化的通式Ⅳ的对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,且C*-原子的构型相应于权利要求1中表示的式Ⅰ化合物C*-原子的R构型。
12.制备如权利要求9中所示基本纯化的通式Ⅸ的哌嗪衍生物对映体的方法,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,A和B具有权利要求9中给定的定义,且C*-原子具有R构型。其特征在于(a)通过进行权利要求1中定义的连续反应步骤,从其相应的醇外消旋体制备其中C*-原子具有R构型的、权利要求1中表示的基本纯化的通式Ⅰ的对映体;(b)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,用羟基保护基保护由上述获得的醇对映体的游离羟基,以生成权利要求9中所示的通Ⅲ的化合物;(c)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,通过硝基取代基的还原作用,将上述获得的基本纯化的对映体转化成为权利要求9中所示的通式Ⅳ的氨基化合物;(d)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,将上述获得的所述氨基化合物转化成权利要求9所示的通式Ⅴ的哌嗪化合物;(e)在保持绝对构型的情况下,通过与权利要求9中所示的通式Ⅶ或Ⅷ化合物(其中的符号具有权利要求9中给定的定义)反应,衍生所述的哌嗪化合物,生成权利要求9中所示的通式Ⅵ的化合物;且(f)最后,在保持C*-原子R构型的情况下,将所述的式Ⅵ化合物去保护,生成权利要求9中所示的通式Ⅸ的游离醇对映体,通式Ⅸ中的符号具有权利要求9中给定的定义。
全文摘要
本发明涉及立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法,其特征在于从其相应的醇外消旋体,通过制备大体纯化的通式(I)对映体(1)立体选择性酯化,(2)从生成的酯分离醇,(3)水解所述的酯生成相应的醇对映体,和(4)在碱性条件下,转化所述的醇对映体成为起始的外消旋体,以使其重复使用。本发明还涉及大体纯化的式I的醇对映体,应用所述的对映体制备药学活性的哌嗪衍生物,和大体纯化的对映中间体。
文档编号C07D319/20GK1101378SQ93121130
公开日1995年4月12日 申请日期1993年12月17日 优先权日1992年12月21日
发明者N·布伊泽, C·G·克卢斯, M·范德兰, G·兰格兰德, G·J·M·沙伦堡, M·C·施诺克 申请人:杜法尔国际研究公司
技术领域:
本发明涉及立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法。本发明还涉及大体上纯化的醇对映体和应用这种对映体制备药学活性的哌嗪衍生物。
各种各样的,例如可用于使用于人或兽医的药物组合物的生物活性物质,在其分子结构中包含手性中心,且因此出现旋光异构体。在现有技术中通常已知的是,经常只有对映体之一存在所需的最适宜的生物活性。在组合物或药剂中存在的其它旋光对映体可引起或提高一些副作用和受体即人体或动物体的负担。通常认为越来越需要以大体纯的对映体形式施用生物活性物质,这些对映体尤其具有所需的生物活性。因此,在药学活性物质的制备方法中外消旋体拆分成其对映体,经常是一个重要的步骤。
利用三种主要的方法将外消旋体拆分成它们各自的对映体。三种方法中的第一种,即,根据不同的物理性质(如结晶结构)拆分,这种方法仅偶然使用。
最经常使用的第二种方法包括与市售的旋光活性剂反应产生非对映体,该非对映体具有不同的物理性质。因此用例如重结晶的方法可分离按这种方式获得的非对映体,此后,通过化学后处理可再生各个对映体。很明显,由于不能应用和回收昂贵的旋光活性试剂,这种拆分外消旋体的方法是即费工又费钱的。
最近,在更经济的拆分方法中,使用酶选择性地使外消旋体的一个对映体化学改性,然后使改性的对映体与未改性的对映体分离。例如Bianchi等人(J.Org.Cher.,1988,53,5531-5534)曾报道用酸酐作酰化剂在脂酶催化下选择性地酯化外消旋的醇。他们成功地获得了高旋光纯度,即对映体过量过量(ee)超过95%的一些伯醇和仲醇。事实上,对大多数药物应用需要的对映体应过量至少95%。尽管Bianchi及其合作者获得了几种结果,也观察到一些醇没有或不足以立体选择转化,最近在Ennis等人的两篇出版物(Tetrahedron Lett.,1992,33,6283-6286和6287-6290)中,酶拆分的方法是使用2-羟甲基-1,4-苯并二噁烷作底物,作者观察到,采用这种方法拆分,不能达到所要求的旋光纯度标准,因此需要重复酶促拆分。
为了从剩余的醇中有利地分离生成的酯,Terao等人(Chem.Pharm.Bull.,1989,37,1653-1655)曾用琥珀酸酐生产琥珀酸单酯对映体,该对映体容易彼此分离,采用碱液洗涤未反应的醇对映体。在此方法中,只用很少的努力,所需的活性对映体就能从不需要的非活性的对映体中分离,尽管旋光纯度(即对映体过量)的结果一般不能令人满意。仅以一种底物,即(1-羟乙基)苯(一种仲醇)作底物,通过与琥珀酸酐进行对映选择性酯化酶促拆分外消旋体是令人满意的。
除了醇外消旋体的酶促拆分经常出现无法预知的结果外,通过上述出版物可断定,另一个固有的问题是从其相应的外消旋体中分离所需的醇对映体。事实上,各种外消旋体拆分除了获得所需的对映体,还获得了通常无用的不需要的旋光对映体。这意味着,至少50%(通常是昂贵的)底物应认为是化学废物,或者换句话说,外消旋体拆分的产率,按活性物计最多50%。这一点通过上述Ennis等人的出版物中的表清楚地证实了,该表显示了无论以未转化的醇或转化后的酯形式,最初的外消旋体可提供50%的所需对映体。
本发明的一个目的是提供一种立体选择性制备杂二环醇对映体的经济的操作方法。
通过上述定义的酶促方法可达到此目的,根据本发明该方法的特征在于大体上纯化的通式(Ⅰ)的对映体 其中X为O、S、NH、N(C1-C4)烷基或CH2;
Y1、Y2和Y3各自独立地为氢或选自卤素、C1-C4烷基、C1-C4烷氧基、C1-4卤代烷基、硝基和氰基的取代基;
NO2取代基连接于双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R或S构型;
是通过其相应的醇外消旋体、,由下述连续反应步骤制备的(ⅰ)在具有立体选择性酯化活性的酶的影响下,所述外消旋体与酰化剂酰化;
(ⅱ)从生成的酯中分离未酯化的化合物,并分离所需的大体纯化的式Ⅰ醇对映体或其酯;
(ⅲ)使生成的酯水解,由此转化所述的酯为相应的醇对映体;且(ⅳ)在碱性条件下,将不需要的醇对映体转化成起始的醇外消旋体,以使其重复应用。
与期望的完全相反,上述碱处理(步骤ⅳ)的结果是不需要的醇对映体的外消旋作用。因为连接在手性中心(C*)的质子根本不是酸性的,这种现象无法解释。由此获得的醇外消旋体可以再用作起始物进行下一个拆分反应。很明显,从经济上和从环境上的角度看,本发明使酶催化立体选择性制备醇对映体成为可行的方法。
上述酰基化反应适合的酰化剂为将在下文例示的酸酐和乙烯基酯,如乙酸乙烯酯,丙酸乙烯酯,丁酸乙烯酯,异丁酸乙烯酯,等等。
酰化反应优选在含有少量水或含水缓冲液的有机溶剂系统中进行。
最经常使用的酶是可商业上购买的粗固体制备物。这易于其回收。然而,所述的酶也可以以固定的条件例如共价结合或吸附在适合载体上使用。通过采用各种分离相关化合物的已知技术如提取、重结晶、制备柱色谱等,可从生成的酯中分离未酯化的化合物。
上述大体纯化的醇对映体,意为含有对映体纯度(ee)起过大约95%的醇化合物。如果在本发明的酶促方法中未达到上述对映体纯度,通常通过简单的重结晶方法可以使对映体的纯度改善到所需水平。当然如本文前述,分离所需的大体上纯化的醇对映体还包括重结晶方法,以提高对映体纯度和除去少量杂质。
关键的反应步骤,即在碱性条件下不需要醇对映体的外消旋作用,可以容易地在质子惰性和protic两种条件下进行。将适合的碱如氢氧化钠、氢氧化钾、氢氧化锂和氢氧化铵等溶于水或含有水混溶有机溶剂(如醇)的含水溶剂混合物中。用于质子惰性系统的碱的例子为(a)氢化物,例如在质子惰性溶剂如DMSO中的氢化钠;(b)醇钾,例如在质子惰性溶剂如醚(例如THF)中的叔丁醇钾和甲基-2-丁醇钾;和(c)烷基锂和烷基酰胺锂,例如在位子惰性溶剂如THF中的甲基锂、各种丁基锂和二异丙基酰胺锂。用酸中和后,可以以好的产率回收醇外消旋体,例如通过用适合的有机溶剂从水相中提取,然后如果需要,蒸发掉溶剂以备再用。
如上述(ⅲ)所述,生成酯的水解可方便地在酸性条件或弱碱性条件下进行,以避免发生醇对映体的外消旋化。
但是,作为本发明的一个具体实施方案,上述酯的水解和醇对映体的外消旋化可以结合。在此方法中,上述反应步骤(ⅲ)和(ⅳ)可被结合,使得通过一个反应步骤获得还原作用。如上述对外消旋反应所定义的,足够强的碱性条件对于同时进行两种作用(即,同时进行水解和外消旋作用)是需要的。
本发明的方法优选旨在通过进行上文所定义的连续反应步骤立体选择性制备具有苯并二噁烷结构的大体纯化的醇对映体,即通式(Ⅱ)化合物 其中Y′为氢或选自氯、氟和甲基的取代基;
NO2取代基连接在苯并二噁烷环的5-或7-位;和
C*-原子或是R或是S构型。
优选使用的酶为固体且因此能够很容易地回收使之重复使用。在上述步骤(ⅰ)后,即在酰化步骤完成后,通过采用适合于此目的的方法(如简单过滤),可以方便地进行酶回收。如果使用的酶是结合在适合载体如硅藻土(见上述Bianchi等人的出版物)或玻璃体上,也可通过简单过滤回收酶,如果需要,然后洗涤滤液去除杂质。
对于使用乙烯酯作为酰化剂优选使用羧酸酐,因为羧酸酐,如乙酸酐、丙酸酐、丁酸酐、异丁酸酐或己酸酐,在适合的酶存在下,通常具有较好的性能。为了利于未酯化的化合物从生成的酯中分离,优选使用环羧酸酐,特别是琥珀酸酐或戊二酸酐。以此方式获得的形成酯,可容易地从未酯化的化合物中分离,即在上述条件下用弱碱溶液提取,此时酯仍然保持完整。
进行立体选择性酯化作用的适合的酶为水解酶,如天然存在和基因工程得到的脂酶和酯酶。适合的脂酶的例子为黑曲霉,假丝酵母(Candida cylindracea)(例如Meito MY 30或Amano AY),解脂假丝酵母,Chromobacterium viscosum,白地霉,Humicola lanuginosa,米赫毛霉,爪哇毛霉(例如Amano M),猪胰腺脂酶,圆弧青霉,娄格法尔特氏青霉,Pseudomonas cepacia(Amano PS),荧光假单胞菌(例如Amano P),雪白根霉(例如Amano N),爪哇根霉(例如Amano F),无根根霉和德列马根霉。与Bianchi等人的出版物中所提出的相反,现已发现,一些脂酶,特别是假丝酵母(Candida cylindracea)脂酶对S对映体优先。因此上述脂酶能够立体选择性酯化S对映体,结果能得到高产率和高立体化学纯度的剩余的R对映体。其它脂酶,例如荧光假单胞菌和其它许多脂酶,优选转化R对映体且因此适合于分离同样高产率和高立体化学纯度的S对映体。
本发明还涉及如前文表示的通式Ⅰ的大体纯化的醇对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位,和C*-原子具有R构型。
通过采用本发明的酶促方法,可方便地获得该对映体。本文此后将说明,该对映体在制备一些药学活性哌嗪衍生物的方法中,可用作关键中间体。
在Drugs of the Future 1988,13,31-33中,描述了flesinoxan盐酸盐,一种有效的口服活性5-HT1A激动剂的合成。相应于上述式Ⅱ,其中Y′为7-氯取代基的外消旋的苯并二噁烷,首先用苯甲酰氯转化以保护其醇功能团。随后催化氢化后与双(氯乙基)胺反应获得外消旋的哌嗪化合物。在此相中,用(+)-樟脑磺酸进行哌嗪外旋体的拆分,几次重结晶后,获得旋光纯的R-(+)-对映体。该对映体与N-(4-氟苯甲酰基)氮丙啶反应,通过苯甲酸酯的皂化作用使羟基去保护,最后用盐酸处理获得所需的大体纯化的(+)-对映体,即flesinoxan·HCl。在上述Ennis等人最近的出版物(Tetrahedron Lett.,1992,33,6287-6290)中,描述了flesinoxan和其旋光对映体的酶促拆分,这是拆分的最后步骤。在费力的双路酶促方法后,所需的flesinoxan可以以令人满意的对映体纯度分离。
从上述明显地看到,所述的flesinoxan制备是费力和昂贵的,特别是因为对映体的费力拆分是建立在这样的多步合成方法前期之上的。很明显,在该合成方法的前期,在拆分中活性物质不可避免的丢失是更不利的。
现已发现,通式Ⅰ的基本纯化的醇对映体可方便地被用作合成药学活性的哌嗪衍生物的关键中间体,因为避免了在多步合成前期费力的外消旋体拆分作用。
因而,本发明还涉及应用本文前述表示的通式Ⅰ的大体纯化醇对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,NO2取代基连接于双环系统的5-位,和C*-原子具有R构型,通过将所述对映体进行下述反应程序,制备药学活性的哌嗪衍生物(ⅰ)用适合的羟基保护基保护游离羟基,同时保持C*-原子的绝对构型,生成下列通式的化合物 其中R1为羟基保护基;
(ⅱ)在保持C*-原子绝对构型的同时,硝基取代基还原,以将所述的式Ⅲ大体纯化的对映体转化为下列通式的胺化合物
(ⅲ)转化上述获得的式Ⅳ化合物成为下列通式的哌嗪化合物 同时保持C*-原子的绝对构型,(ⅳ)保持C*-原子绝对构型的同时,将所述的式Ⅴ哌嗪化合物衍生为下列通式的哌嗪衍生物
其中A为直链或支链C2-C4亚烷基,和B为苯基或选自噻吩基、吡喃基、呋喃基、吡咯基、吡啶基和吡嗪基的杂环基,其中的基团可被一个或多个选自卤素、C1-C3烷基、C1-C3卤代烷基、氰基、硝基、羟基、酯化羟基和C1-C3烷氧基的取代基取代,该方法是通过所述的式Ⅴ哌嗪化合物,或者(a)与下列通式的化合物反应其中L为离去基团,优选地选自氯、甲磺酸根和甲苯磺酸根,或者(b)与下列通式的化合物反应 生成其中A是亚乙基的通式Ⅵ哌嗪衍生物;且最后(ⅴ)将所述的式Ⅵ化合物去保护生成下列通式的游离醇对映体
其中C*-原子具有R-构型。
从上所述可以清楚地看出,在保持C*-原子绝对构型的情况下,可容易地进行上述随后的反应步骤,由此不损害最终哌嗪衍生物的对映体纯度。
通过适合的酯或醚功能团可以保护游离的羟基(反应步骤ⅰ)。适合的羟基保护基的例子为(三烃基)甲硅烷基,(二烃基)(烃氧基)甲硅烷基,叔(C4-C12)烷基,(可选择性取代的)苯氧基[(C2-C8)二烷基]乙基,(C1-C4)烷氧基[(C2-C8)二烷基]甲基,构成(硫)乙缩醛的基团如二-和四氢吡喃-2-基和二-和四氢呋喃-2-基,以及从单一、二-或三-取代的乙酸衍生的构成酯的基团,其中取代基优选选自(C1-C12)烷基和可选择地具有一个或多个取代基的取代苯基,可选择地具有一个或多个甲基的取代环己烷甲酸或金刚烷甲酸。上述术语烃基包括(C1-C8)烷基,(C2-C8)链烯基,(C2-C8)链炔基,苯基和被一个或多个取代基取代的苯基。上述苯基和苯氧基适合的取代基为羟基,烷氧基,烷基羰基氧基,氨基,烷基氨基,二烷基氨基,烷基羰基氨基,烷基磺酰氨基,硝基,烷基磺酰基,烷基羰基,卤素,氰基,烷基(其中烷基取代基包含1至5碳原子),和(C3-C12)环烷基。
硝基生成氨基的还原作用(步骤ⅱ),可以方便地在适合的金属催化剂例如Pd/C的影响下、在适合的极性有机溶剂例如乙醇中与氢进行。
氨基化合物转化成哌嗪化合物(步骤ⅲ)可容易地例如借助双(2-氯乙基)胺、在适合的有机溶剂例如芳香烃如甲苯和氯苯等中进行。
上述(ⅳ)中定义的反应步骤优选如欧洲专利说明书138280中所述,即在惰性有机溶剂或无溶剂中、以及在所述专利说明书中所述的反应条件下进行。
最后羟基的去保护可与适合于酯或醚裂解的反应试剂一起进行。在弱碱或酸性条件下,在保持C*-原子绝对构型的情况下,酯可以很容易地被水解。醚的裂解优选借助强酸在有机溶剂中进行。
本发明还涉及上述反应程序中的新中间体,即,前述表示的通式Ⅲ和Ⅳ的大体纯化的对映体,其中X和取代基Y具有前述给定的定义,并且C*-原子构型与上述式Ⅰ化合物C*-原子的R构型相应。
本发明最后涉及制备上述通式Ⅸ的大体纯化的哌嗪衍生物对映体的方法,该方法首先是从其相应的外消旋醇进行本文上述连续的反应步骤制备前述通式Ⅰ的大体纯化的醇对映体(该对映体中C*-原子具有R构型),接着借助上述定义的反应程序将所述的式Ⅰ化合物转化成所需的哌嗪衍生物。
现在将用下述具体的实施例更详细地说明本发明。
实施例Ⅰ伴随搅拌,在37℃将125mM(±)-2,3-二氢-5-硝基-7-氯-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇(BDA)、250mM丙酸酐和0.2%(w/v)荧光假单胞菌脂酶(Amano P)在TBME(叔-丁基甲基醚)/己烷/水(50/50/0.1v/v/v)中的溶液中保温。转化80%后(醇的酯化),过滤掉酶终止反应。在Zorbax C-8柱上分离出生成的酯和剩下的醇,采用手性α-糖蛋白(AGP)柱分析剩余醇的对映体量。不经分离还可通过1H-NMR,采用(+)-或(-)-三氟甲基-9-蒽甲醇作为手性拆分溶剂确定剩余醇和生成酯的对映体过量。剩余的醇中含有对映体过量97.5%的S-(-)-醇。
实施例Ⅱ采用实施例Ⅰ中所述的相应方法,用0.2%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)进行酯化,69%的醇转化后,停止反应。剩下的醇中含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。如实施例Ⅰ中所述,通过1H-NMR谱鉴定R-(+)-醇。测得在乙腈中R-(+)-BDA的具体旋光度为[α]25D=+181.1°。
采用相应的方法制备R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-7-甲基-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇和R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇,具有同样高的对映体过量。
实施例Ⅲ在25℃,伴随搅拌将250mM(±)-BDA、500mM丁酸酐和0.5%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在己烷/乙酸乙酯/水(50/50/0.2v/v/v)中的溶液保温。65%的醇转化后,停止反应,剩下的醇中含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。
实施例Ⅳ采用实施例Ⅲ中所述的相应方法,将250mM(±)-BDA分别与500mM异丁酸酐或己酸酐保温。分别转化了63%和60%的醇后,停止反应,在两种情况下都含有对映体过量97.5%的R-(+)-醇。
实施例Ⅴ在室温下,伴随搅拌将350mM(±)-BDA、600mM琥珀酸酐和2.4%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.6v/v/v)中的溶液保温。70%醇转化后,过滤停止反应。剩下的醇含有对映体过量98%的R-(+)-对映体。
实施例Ⅵ对映选择性酯化作用反应式 将15.2kg(±)-BDA、7.6kg琥珀酸酐和3.7kg Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在200l叔丁基甲基醚(MTBE)、17.51乙腈和925ml水的混合物中的溶液,在反应容器中、在室温和氮气氛下保温。达到60-63%转化(HPLC,大约20小时)后,过滤掉酶终止反应。用10l MTBE洗涤酶两次,并且有机层用901和301碳酸盐水溶液(150g Na2CO3在1l水中)连续冲洗。用10l MTBE萃取碳酸盐溶液两次。然后,合并的有机层用30l水、通过将40l30%HCl溶于15l水中得到的稀盐酸和10l水连续洗涤。在60℃真空下蒸馏掉MTBE。将结晶残余物(4.6kg)在60℃溶入15l96%EtOH,伴随搅拌向此溶液中加入10l正己烷。将混合物冷却到大约10℃,搅拌2至10小时后,吸出结晶产物,用10l乙醇/己烷(15/35v/v)并用5l正己烷连续洗涤并干燥,结晶产物是纯(ee98%)(+)-对映体,即,R-(+)-2,3-二氢-5-硝基-7-氯-1,4-苯并二噁烷-2-甲醇[R-(+)-BDA];产量大约4kg。
熔点116.0℃;[α]25D=+194.8℃(c=4.5;甲醇)。
实施例Ⅶ生成的S-(-)-BDA酯的皂化作用反应式 在大约23℃向实施例Ⅵ实验的合并水层中加入15l 50%NaOH。在23℃搅拌反应混合物大约15小时,然后冷却到5℃,接枝后,在5℃搅拌混合物3小时。吸出结晶产物后,用60l水洗涤并干燥以大约10kg的产量获得具有过量S-(-)-BDA对映体的产物醇。
实施例ⅧS-(-)-BDA对映体的外消旋作用反应式 在氮气和回流下,将实施例Ⅶ获得的S-(-)-BDA以1kg的量溶于6l正丙醇中。用大约15分钟向此溶液中加入235ml 2N NaOH水溶液。使溶液回流1.5小时。冷却到大约40℃后,加入47ml浓HCl溶液(至pH=3)。在大约60℃下真空蒸掉丙醇。向残余物中加入4l正己烷,冷却到20℃并伴随缓慢搅拌使该溶液接枝,在20℃搅拌二小时且在0℃过夜后,吸出结晶产物并用0.5l正己烷洗涤两次,然后使结晶产物与7.5l水在大约70℃搅拌1小时,冷却至20℃后,加入350ml正己烷并再搅拌一小时,过滤掉结晶产物并用0.5l正己烷洗涤两次。干燥后,以产量850g获得所需的外消旋BDA;含量95%;ee=0。熔点108.2℃。
同样通过以二异丙基氨基化锂作为碱、在THF作为溶剂下也可完成外消旋步骤反应温度40℃;5.5小时后外消旋作用完全。
实施例ⅨS-(-)-BDA酯的皂化和同时发生的外消旋作用向一等份在实施例Ⅵ中获得的碱水层(由此得到43.5g(126mmol)S-(-)-BDA酯、620ml碳酸盐水溶液(150g Na2CO3在1l水中),150ml水和59ml乙腈)中加入250ml乙醇和50ml 50%w/v氢氧化钠水溶液。伴随搅拌回流反应混合物16小时。冷却到40℃后,小心加入160ml12N盐酸水溶液(pH大约为5)。将反应混合物冷却到室温,此后吸出固体产物,用水洗涤并干燥。获得对映体过量为0的23.8g浅棕色(±)-BDA。
实施例Ⅹ从R-(+)-BDA制备flesinoxan反应式 (a).在溶剂二氯甲烷中,R-(+)-BDA(1)与苯甲酰氯进行苯甲酰化作用生成化合物(2)。
向20g(0.081mol)化合物(1)在250ml二氯甲烷和12ml三乙胺中的溶液中,滴加10.1ml(0.086mol)苯甲酰氯;温度为25℃。加入10ml水并搅拌10分钟后分离液层。用50ml水冲洗有机层,用25ml二氯甲烷萃取合并的水层。合并有机层,并在100毫巴和30℃蒸发。加入100ml甲苯后,将产物蒸发至干燥(10mbar,50℃)。
获得所需的化合物2,产率97.3%,纯度97.5%。
TLC(洗脱剂CH2Cl2/CH3OH/NH4OH=94/5/1)∶Rf=0.71。
(b).在催化量的Pd/C存在下用氢气还原硝基-化合物(2)成相应的氨基-化合物(3);乙醇为溶剂。
向6.0g(16.7mmol)化合物(2)在120ml乙醇和40ml乙酸乙酯中的溶液中加入1.50gPd/C制备物(39.1%Pd/C10%和60.9%水)。搅拌5分钟后,加入10.8g(10当量)甲酸铵,开始在室温下搅拌混合物1小时,然后在40℃搅拌2小时。将反应混合物冷却到20~25℃,滤掉Pd/C并用50ml乙醇洗涤。在100毫巴和50℃蒸发乙醇。残余物溶于75ml乙酸乙酯和5ml 2N氢化化钠水溶液。液层分离后,用10ml乙酸乙酯萃取水层两次。合并的有机层用25ml水洗涤二次,并在100毫巴和50℃减压至干。在50℃真空干燥后,获得的所需产物(3),纯度为96.0%,产率97.0%。
TLC(见上述)Rf=0.67。盐酸盐的熔点218-223℃。[α]25D=+65.1°(c=3.38;甲醇)。
(c)以二甲苯作溶剂用双(2-氯乙基)胺盐酸盐转化氨基化合物(3)成相应的哌嗪-化合物(4)。
向4.40g(14.8mmol)化合物(3)的50ml二甲苯溶液中加入2.8g(14.8mmol)双(2-氯乙基)胺盐酸盐。在氮气氛下回流反应混合物48小时。将反应混合物冷却至35℃后,加入在25ml 5%碳酸氢钠水溶液中的1.36ml 50%氢氧化钠水溶液。将反应混合物在35℃下搅拌3小时,然后加入10ml 2N氢氧化钠水溶液和20ml水。在35℃搅拌10分钟后,将反应混合物冷却至20-25℃,分离液层。用25ml水洗涤二甲苯层三次。在10mbar和50℃将有机层减压至干(100%乙醇为共沸剂)。获得所需产物(4),纯度85.5%,产率82.3%。
TLC(见上述)Rf=0.07,HCl-盐的熔点183-186℃。[α]25D=+63.66°(c=1.67;CH3OH)。
(d)哌嗪化合物(4)与4-氟苯甲酰基氮丙啶反应生成化合物(5)。
将对氟苯甲酰基氮丙啶(53.8g;325mmol)和200ml甲苯加入到100.7g(284mmol)的化合物(4)中。将反应混合物保持在80℃减压下(旋转蒸发);蒸发150ml。加入100ml甲苯后,如上所述再处理反应混合物2小时。蒸发至干后,将甲醇加入到残余物中并使产物在5℃结晶。吸出产物后,用甲醇(200ml)和己烷(400ml)连续洗涤,并干燥。获得所需化合物5,纯度为82%,产量为105g(71%)。处理母液获得附加量的所需产物。
TLC(见上述)Rf=0.59。熔点126-127℃[α]25D=+56°。(c=4.32;CH3OH)。
(e)在EtOH中酯(5)与KOH皂化,随后在EtOH中用HCl酸化,生成flesinoxan(6)。
向104g(0.2mol)化合物(5)在1500ml 96%乙醇中的悬浮液中加入14g(0.25mol)KOH在10ml水中的溶液。在20-25℃搅拌3.5小时后,在100mbar和50℃蒸发乙醇。将水(500ml)和二氯甲烷(200ml)加入到残余物中,并将反应混合物搅拌5分钟。分离液层后,水层用250ml二氯甲烷萃取。合并的有机层用100ml水洗涤两次。干燥后,将有机溶液蒸发至剩余体积大约200ml。向此残余物中加入300ml乙酸乙酯,并蒸发掉100ml液体。加入100ml正己烷后,使产物在5℃结晶过夜。过滤结晶产物,用30ml冷乙酸乙酯和200ml正己烷连续洗涤,在30℃干燥。获得Flesinoxan(纯度78%),产量73g。
TLC(见上述)Rf=0.67。熔点183-185℃[α]20D=+27.8°(c=2.49;CH3OH)。
实施例Ⅺ在室温下伴随搅拌将0.2M 5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英(dioxin)-2-甲醇、0.34M琥珀酸酐和2%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.3v/v/v)中的溶液保温。41%醇转化后(用Zorbax C-柱确定),过滤终止反应。剩下的醇含有对映体过量38%(应用Chiracel -OD柱确定)的(+)-对映体。
实施例Ⅻ6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇的制备反应式 (a)搅拌下向18.5g(91mmol)化合物(7)在50ml甲苯中的悬浮液中加入30ml(314mmol)乙酸酐。
在100℃加热4小时后,加入另外10ml的乙酸酐。再连续加热2小时。除去热浴后小心加入大约25ml乙醇。冷却到室温后,反应混合物用乙酸乙酯和水处理。有机层用水洗涤两次并用硫酸镁干燥,过滤后真空蒸发溶剂。向18.23g的浅棕色固体中加入75ml乙醇和80ml 2N氢氧化钠水溶液。在室温下整夜搅拌此暗红色悬浮液。冷却到0℃后,加入90ml 2N盐酸溶液。吸出固体物质并用水洗涤两次,在室温和常压下干燥后,获得16.5g桔黄色粉末(8)。
TLC(洗脱剂乙酸乙酯/石油醚40-65℃=50/50)Rf=0.3,熔点156-160℃。
(b)向8g(34.5mmol)化合物(8)在80ml甲苯和80ml 1-甲基-2-吡咯烷酮混合物中的溶液中加入5.6g(40mmol)碳酸钾粉末。在回流温度下搅拌反应混合物一小时,通过迪安-斯达克榻装置除去水。在大气压下蒸掉甲苯。冷却到100℃后,加入9.3g(41mmol)甲苯磺酸缩水甘油酯。在120℃搅拌4.5小时后,将悬浮液冷却至室温。用水和乙酸乙酯稀释反应混合物,并用2N盐酸水溶液使pH升至5。水层用乙酸乙酯萃取两次。合并的有机层用盐水洗涤并用硫酸镁干燥,过滤掉硫酸镁后,在真空条件下蒸发溶剂,获得10.86g深棕色油。经中压色谱纯化(洗脱剂乙酸乙酯/石油醚40-65℃=25/75)得到红色片状的4.18g化合物(9)。
熔点76-84℃。
TLC(见上述)Rf=0.15。
(c)向3g(10mmol)化合物(9)在100ml甲醇和30ml水混合物中的悬浮液中加入1.44g碳酸钾粉末。在室温下搅拌1.5小时后,用水稀释处理该反应混合物,并用乙酸乙酯萃取两次。合并的有机层用稀盐水洗涤三次并用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁后,真空蒸发溶剂,获得2.53g桔黄色固体化合物(10)(NMR)。
TLC(乙酸乙酯/石油醚40-65℃=75/25)Rf=0.3。
1H-NMRδ(ppm)6.99(d,1H,芳香);6.90(s,1H,NH);6.88(d,1H,芳香);5.02(t,1H,CH2OH);4.19(dd,1H,OCH2CH);4.11(dd,1H,OCH2CH);3.40/3.50(群峰,3H,CHCH2OH)。
实施例ⅩⅢ将0.35M 6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇、0.6M琥珀酸酐和3.3%(w/v)Candida cylindracea脂酶(Meito MY)在TBME/乙腈/水(90/10/0.6v/v/v)中的溶液,伴随搅拌在室温下保温。转化47%的醇后(应用Zorbax C-柱确定),过滤终止反应。剩余的醇中含有对映体过量39%的(+)-对映体(应用Chiracel -OD柱确定)。
实施例ⅩⅣ将0.13M2,3-二氢-7-硝基-1,6-苯并二噁英-2-甲醇、0.24M丁酸酐和25%(w/v)脂酶在二异丙基醚/乙腈/水(50/50/0.5v/v/v)中的溶液,伴随搅拌在室温下保温。64%的醇转化手,过滤终止反应。剩余的醇含有对映体过量42.4%的(+)-对映体。
实施例ⅩⅤ(+)-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇的外消旋化向0.1g(47mmol)(+)-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇([α]20D=+65.5(c=0.58,96%乙醇))在15ml乙醇中的溶液中加入0.2ml(40mmol)2N氢氧化钠溶液。回流125小时后,使反应混合物冷却至室温。用水稀释反应混合物并用乙酸乙酯萃取两次,有机层用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁后,真空下蒸发溶剂,获得0.1g浅棕色固体物质。旋光率(见上述)为0,采用手性α-糖蛋白(AGP)柱分析对映体过量,结果为ee=0。
采用正丙醇作溶剂,结果反应30小时。
实施例ⅩⅥ(+)-5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇的外消旋向0.85g(3.46mmol)(+)-5-氯-2,3-二氢-7-硝基-1,4-苯并二噁英-2-甲醇([α]20D=+55(c=0.4,乙醇))在80ml乙醇中的溶液中加入15ml 2N氢氧化钠水溶液。回流16小时后,使混合物冷却至室温,并如实施例XV所述进行处理。获得的固体物质的旋光率(见上述)为0。在Chiracel-OD柱上的手性分析显示出ee=0。
实施例ⅩⅦ(+)-6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇向2g(8.18mmol)(+)-6-氯-2,3-二氢-8-硝基-1,4-苯并噁嗪-3-甲醇([α]20D=+14(c=0.71,96%乙醇))在50ml乙醇中的溶液中加入2N氢氧化钠水溶液。回流3小时后,加入1ml其它等份的2N氢氧化钠水溶液。回流32小时后,使反应混合物冷却至室温,并用盐水稀释,水层用乙酸乙酯萃取两次。
合并的有机层用稀盐水洗涤两次并用硫酸镁干燥。过滤掉硫酸镁并真空蒸发溶剂后,获得1.83g橙棕色固体物质。旋光率为0,并且在Chiracel-OD柱上的手性分析显示出ee=0。
实施例ⅩⅧ通过氢化钠的外消旋作用向0.2g(0.8mmol)R-(+)-BDA和悬浮于矿物油中的0.01g(0.5当量)60%氢化钠的混合物中加入5mlDMF。气体停止发生后,在室温搅拌此桔黄色溶液,在0.75小时内完成外消旋反应,通过Chiracel-OD柱进行分析。
在THF溶剂中,同样成功地发生该反应。
权利要求
1.立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法,其特征在于通过下述连续反应步骤从其相应的醇外消旋体制备大体上纯化的通式(Ⅰ)的对映体 其中X为O、S、NH、N(C1-C4)烷基或CH2;Y1、Y2和Y3各自独立地为氢或选自卤素、C1-C4烷基、C1-C4烷氧基、C1-4卤代烷基、硝基和氰基的取代基;NO2取代基连接于双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R或S构型;(i)在具有立体选择性酯化活性的酶的影响下,用酰化剂使所述外消旋体酰化;(ii)从生成的酯中分离未酯化的化合物,并分离所需的大体纯化的式Ⅰ醇对映体或其酯;(iii)使生成的酯水解,由此转化所述的酯为相应的醇对映体;且(iv)在碱性条件下,将不需要的醇对映体转化成起始的醇外消旋体,以使其重复应用。
2.如权利要求1的方法,其特征在于采用足够强的碱性条件使(ⅲ)和(ⅳ)的反应步骤结合,以同时进行酯水解和醇对映体的外消旋作用。
3.根据权利要求1或2的方法,其特征在于基本上纯化的通式(Ⅱ)对映体是通过权利要求1的连续反应步骤制备的, 其中Y1是氢或选自氯、氟和甲基的取代基;NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位;和C*-原子或是具有R构型或是具有S构型。
4.根据上述任一权利要求的方法,其中反应步骤(ⅰ)后,用适合于回收目的的方法回收酶。
5.根据上述任一权利要求的方法,其特征在于羧酸酐用作酰化剂。
6.根据权利要求5的方法,其特征在于琥珀酸酐或戊二酸酐用作酰化剂。
7.根据上述任一权利要求的方法,其特征在于采用的酶是具有立体选择性酯化活性的脂酶或酯酶。
8.权利要求1中表示的基本纯化的通式Ⅰ的醇对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-或7-位;且C*-原子具有R构型。
9.应用权利要求1中表示的基本上纯化的通式Ⅰ的醇对映体,通过将所述对映体进行下述反应程序,制备药学活性的哌嗪衍生物的用途其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,NO2取代基连接在双环系统的5-位;且C*-原子具有R构型,(ⅰ)在保持C*-原子绝对构型的同时,用适当的羰基保护基保护游离羟基,以生成通式Ⅲ化合物 其中R1为羟基保护基;(ⅱ)在保持C*-原子绝对构型的同时,硝基取代基还原,以转化所述基本上纯化的式Ⅲ对映体成为通式(Ⅳ)的胺化合物 (ⅲ)在保持C*-原子绝对构型的同时,转化上述获得的式Ⅳ的氨基化合物成为通式(Ⅴ)的哌嗪化合物 (ⅳ)在保持C*-原子绝对构型的同时,将所述Ⅴ的哌嗪化合物衍生成通式(Ⅵ)的哌嗪衍生物 其中A为直链或支链C2-C4亚烷基,和B为苯基或选自噻吩基、吡喃基、呋喃基、吡咯基、吡啶基和吡嗪基的杂环基,其中的基团可被一个或多个选自卤素、C1-C3烷基、C1-C3卤代烷基、氰基、硝基、羟基、酯化羟基和C1-C3烷氧基取代,该方法是通过所述的式Ⅴ哌嗪化合物,或者(a)与下列通式的化合物反应L-A-NH-CO-B(Ⅶ)其中L为离去基团,优选选自氯、甲磺酸根和甲苯磺酸根,或者(b)与下列通式的化合物反应 生成其中A是亚乙基的通式Ⅵ的哌嗪;并且最后(ⅴ)所述的式Ⅵ化合物去保护,生成通式(Ⅸ)的游离醇对映体 其中C*-原子具有R-构型。
10.权利要求9中所表示的、基本纯化的通式Ⅲ对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,且C*-原子的构型相应于权利要求1中表示的式Ⅰ化合物C*-原子的R构型。
11.权利要求9中表示的、基本纯化的通式Ⅳ的对映体,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,且C*-原子的构型相应于权利要求1中表示的式Ⅰ化合物C*-原子的R构型。
12.制备如权利要求9中所示基本纯化的通式Ⅸ的哌嗪衍生物对映体的方法,其中X和取代基Y具有权利要求1中给定的定义,A和B具有权利要求9中给定的定义,且C*-原子具有R构型。其特征在于(a)通过进行权利要求1中定义的连续反应步骤,从其相应的醇外消旋体制备其中C*-原子具有R构型的、权利要求1中表示的基本纯化的通式Ⅰ的对映体;(b)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,用羟基保护基保护由上述获得的醇对映体的游离羟基,以生成权利要求9中所示的通Ⅲ的化合物;(c)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,通过硝基取代基的还原作用,将上述获得的基本纯化的对映体转化成为权利要求9中所示的通式Ⅳ的氨基化合物;(d)在保持C*-原子的绝对构型的情况下,将上述获得的所述氨基化合物转化成权利要求9所示的通式Ⅴ的哌嗪化合物;(e)在保持绝对构型的情况下,通过与权利要求9中所示的通式Ⅶ或Ⅷ化合物(其中的符号具有权利要求9中给定的定义)反应,衍生所述的哌嗪化合物,生成权利要求9中所示的通式Ⅵ的化合物;且(f)最后,在保持C*-原子R构型的情况下,将所述的式Ⅵ化合物去保护,生成权利要求9中所示的通式Ⅸ的游离醇对映体,通式Ⅸ中的符号具有权利要求9中给定的定义。
全文摘要
本发明涉及立体选择性制备杂二环醇对映体的酶促方法,其特征在于从其相应的醇外消旋体,通过制备大体纯化的通式(I)对映体(1)立体选择性酯化,(2)从生成的酯分离醇,(3)水解所述的酯生成相应的醇对映体,和(4)在碱性条件下,转化所述的醇对映体成为起始的外消旋体,以使其重复使用。本发明还涉及大体纯化的式I的醇对映体,应用所述的对映体制备药学活性的哌嗪衍生物,和大体纯化的对映中间体。
文档编号C07D319/20GK1101378SQ93121130
公开日1995年4月12日 申请日期1993年12月17日 优先权日1992年12月21日
发明者N·布伊泽, C·G·克卢斯, M·范德兰, G·兰格兰德, G·J·M·沙伦堡, M·C·施诺克 申请人:杜法尔国际研究公司
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